CN103997974B - 用于处理细胞的系统和方法 - Google Patents

用于处理细胞的系统和方法 Download PDF

Info

Publication number
CN103997974B
CN103997974B CN201280055019.5A CN201280055019A CN103997974B CN 103997974 B CN103997974 B CN 103997974B CN 201280055019 A CN201280055019 A CN 201280055019A CN 103997974 B CN103997974 B CN 103997974B
Authority
CN
China
Prior art keywords
tissue samples
cutting surface
district
chopping
chopping tool
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201280055019.5A
Other languages
English (en)
Other versions
CN103997974A (zh
Inventor
鲁兹贝赫·R·塔吉扎德
约翰·米德
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Aokang Cell Lab Co
Original Assignee
Aokang Cell Lab Co
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Aokang Cell Lab Co filed Critical Aokang Cell Lab Co
Publication of CN103997974A publication Critical patent/CN103997974A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN103997974B publication Critical patent/CN103997974B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0603Embryonic cells ; Embryoid bodies
    • C12N5/0605Cells from extra-embryonic tissues, e.g. placenta, amnion, yolk sac, Wharton's jelly
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02Preservation of living parts
    • A01N1/0236Mechanical aspects
    • A01N1/0242Apparatuses, i.e. devices used in the process of preservation of living parts, such as pumps, refrigeration devices or any other devices featuring moving parts and/or temperature controlling components
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B02CRUSHING, PULVERISING, OR DISINTEGRATING; PREPARATORY TREATMENT OF GRAIN FOR MILLING
    • B02CCRUSHING, PULVERISING, OR DISINTEGRATING IN GENERAL; MILLING GRAIN
    • B02C18/00Disintegrating by knives or other cutting or tearing members which chop material into fragments
    • B02C18/06Disintegrating by knives or other cutting or tearing members which chop material into fragments with rotating knives
    • B02C18/08Disintegrating by knives or other cutting or tearing members which chop material into fragments with rotating knives within vertical containers
    • B02C18/10Disintegrating by knives or other cutting or tearing members which chop material into fragments with rotating knives within vertical containers with drive arranged above container
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B02CRUSHING, PULVERISING, OR DISINTEGRATING; PREPARATORY TREATMENT OF GRAIN FOR MILLING
    • B02CCRUSHING, PULVERISING, OR DISINTEGRATING IN GENERAL; MILLING GRAIN
    • B02C18/00Disintegrating by knives or other cutting or tearing members which chop material into fragments
    • B02C18/30Mincing machines with perforated discs and feeding worms
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M45/00Means for pre-treatment of biological substances
    • C12M45/02Means for pre-treatment of biological substances by mechanical forces; Stirring; Trituration; Comminuting
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M45/00Means for pre-treatment of biological substances
    • C12M45/05Means for pre-treatment of biological substances by centrifugation
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M45/00Means for pre-treatment of biological substances
    • C12M45/09Means for pre-treatment of biological substances by enzymatic treatment
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M45/00Means for pre-treatment of biological substances
    • C12M45/22Means for packing or storing viable microorganisms
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2509/00Methods for the dissociation of cells, e.g. specific use of enzymes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2509/00Methods for the dissociation of cells, e.g. specific use of enzymes
    • C12N2509/10Mechanical dissociation

Abstract

本发明高效地并高成本效益地从组织中提取和收集细胞。本发明人发现,使用具有多个部件的系统或工具套件,可以将组织高效地碎裂并且可以纯化所得到的细胞。本发明的优点在于组织处理在封闭系统中进行,使得即使在处理期间移除某些部件,也可以例如通过使用阀、夹子和热密封在整个过程中维持无菌性。此外,任何或所有步骤可以根据应用或用户的具体需求自动或手动地完成。

Description

用于处理细胞的系统和方法
与相关申请的交叉引用
本申请要求2011年11月8日提交的美国临时专利申请No.61/557,127的优先权和利益,并以其全部内容通过引用并入本文。
技术领域
在各种实施方式中,本发明涉及用于处理组织以分离和收集靶细胞的系统和方法。
发明背景
从组织样本中纯化活细胞可能是繁琐的过程,其涉及解剖和其他手动操作和处理步骤,并且在某些情况下涉及细胞培养。在纯化过程期间维持细胞的无菌性也是重要的考虑因素。尽管层流罩可用于维持无菌性,但它们具有许多缺点。例如,这样的层流罩价格昂贵、相对难以移动、使用麻烦并消耗宝贵的实验室空间。细胞纯化过程的效率是另一个考虑因素,其使纯化过程进一步复杂化。从组织样本中分离稀少细胞例如干细胞,需要高效的过程来回收尽可能多的细胞。
对于用于提取和收集细胞例如干细胞的实用、高成本效益、无菌且高效的机制和方法仍存在需求,以便推进依赖于这些细胞的给药的潜在疗法。
发明内容
本发明高效并高成本效益地从组织中提取并收集细胞。本发明人发现,使用具有多个部件的系统或工具套件,可以高效地破碎组织并且可以纯化所得到的细胞。本发明的优点在于组织处理在封闭系统中发生,使得即使在处理期间移除某些部件,也可以例如通过使用阀、夹子和热密封在整个过程中维持无菌性。此外,任何或所有步骤可以根据应用或用户的具体需求自动或手动地完成。
因此,一方面,本发明涉及一种组织切碎工具。所述组织切碎工具包括用于组织样本的区室(compartment),在所述区室的一个末端处的切削表面,以及无菌密封容器。所述切削表面将所述区室与所述无菌的密封容器分隔开,使得通过所述切削表面的组织样本可以沉积在所述容器内。所述切削表面的尺寸被设置成将所述组织样本切碎成平均横截面不超过4平方毫米的碎片。例如在本发明的各个实施方式中,所述平方毫米数可以不超过3、2、1、0.5、0.3、0.2、0.1或0.05。所述组织切碎工具还可以包括第二切削表面,用于进一步减小所述碎片的平均横截面。所述组织切碎工具的切削表面可以包括自动切削系统。例如,所述切削表面可以包括半自动剪刀。可以一个或多个切碎器筛网位于所述切削表面附近。所述组织切碎工具可以进一步包括吸盘,用于在运行期间使工具稳定。所述组织切碎工具另外或者可替选地包括与所述无菌密封容器连通的流体导管以及在所述流体导管内的分离器单元例如一个或多个过滤器。所述无菌密封容器任选地包括至少一个密封的进入端口,允许将流体无菌导入到所述容器中。
在所述组织切碎工具中,所述用于组织样本的区室可以合并一个或多个零件,用于促进向所述组织样本施加力,推动它超出所述切削表面并进入所述无菌的密封容器。例如,所述区室的一部分可以造型成接受实心元件以压缩所述组织样本。这样的实心元件可以任选地与组织切碎工具一起被包括,不论是与所述组织切碎工具相连还是作为分开的部件提供。
在一种实施方式中,所述区室的靠近所述切削表面的部分具有基本上恒定的横截面,使得可以将同样形状的实心元件导入到所述区室中并填充该部分,同时将所述组织样本压入到所述切削表面中或通过所述切削表面。在另一种实施方式中,靠近所述切削表面的区室具有锥形或圆锥形末端。在某些实施方式中,所述区室的内表面带有螺纹,使得可以引导带有螺纹的实心元件进入所述区室中。在某些实施方式中,所述区室还包括垫圈,该垫圈可以在将实心元件导入到所述区室中时提供改进的密封。在另一种实施方式中,所述组织切碎工具包括轴曲柄,用于将所述切削表面朝向所述组织样本移动。
本发明还提供了通过推动所述组织样本通过工具的切削表面,来使用任何上述组织切碎工具的方法。本发明提供了切碎组织样本并任选地将酶注入到所述无菌密封容器中,使得所述酶增强所述切碎的组织的消化的方法。所述酶可以是蛋白酶,例如分开或组合的胶原酶、透明质酸酶或分散酶。通过切碎和/或消化所述组织样本并除去大于约40微米的碎片(例如,被孔径为约500微米的过滤器保留的碎片,或被孔径为约300微米的过滤器保留的碎片,或被孔径为约250微米的过滤器保留的碎片,或被孔径为约150微米的过滤器保留的碎片,或被孔径为约100微米的过滤器保留的碎片,或被孔径为约70微米的过滤器保留的碎片,或被孔径为约40微米的过滤器保留的碎片),可以任选地将这些步骤合并在从所述组织样本分离细胞的方法中。这些在本文中被称为“未消化的组织”的较大碎片,可以通过过滤或沉积除去。这些方法对于从各种固体组织中的任一种纯化细胞来说是有效的。例如,本文描述的方法可以从脂肪组织或胞衣组织例如胎盘或脐带组织或更具体为包含的脐带胶样组织的组织分离细胞,例如干细胞。在某些实施方式中,所述组织样本基本上不含血管,其可以任选地在将所述组织置于所述区室中之前从所述组织剖下。
另一方面,本发明涉及一种细胞收集方法,其包括在细胞收集装置中沉积细胞。所述细胞收集装置包括用于包含细胞的流体的无菌容器以及与所述无菌容器连通的流体通道。所述流体通道包括细胞捕获区,使得所述细胞捕获区的容积可以小于所述无菌容器的容积的5%,并且所述无菌容器和细胞捕获区可以构造成使得在所述无菌容器中,所述细胞从所述流体的沉积使所述细胞浓缩在所述细胞捕获区中。这一方面或任何下述方面可以具有任何下述实施方式。所述细胞收集装置进一步包括与所述流体通道连通的第二无菌容器和/或用于调控所述第二无菌容器中材料的通道的可移除的夹子。所述第二无菌容器可以是可热密封的和/或袋子。所述细胞收集方法还可以包括对所述细胞收集装置进行离心以加速所述细胞的沉积,并且所述细胞可以是脐带胶样组织干细胞。所述流体包括机械切碎的和/或酶消化的脐带组织。所述细胞收集方法还可以包括向所述细胞添加冷冻保护剂;所述冷冻保护剂包括DMSO、白蛋白和/或葡聚糖。所述方法还可以包括向所述细胞添加自体血浆。
另一方面,本发明涉及一种细胞收集装置,其具有包含细胞的流体,用于容纳所述细胞的无菌容器和与所述无菌容器连通的流体通道。所述流体通道包括细胞捕获区,其中所述细胞捕获区的容积可以小于所述无菌容器的容积的5%,并且所述无菌容器和细胞捕获区可以构造成使得在所述无菌容器中,所述细胞从所述流体的沉积使所述细胞浓缩在所述细胞捕获区中。这一方面或任何下述方面可以具有任何下述实施方式。所述细胞收集装置另外或可替选地包括与所述流体通道连通的第二无菌容器和/或用于调控所述第二无菌容器中材料的通道的可移除的夹子。所述第二无菌容器可以是可热密封的和/或袋子。
另一方面,本发明涉及一种细胞收集装置,其具有用于包含细胞的流体的无菌容器,使得所述无菌容器可以适合用于沉积,以及与所述无菌容器连通的流体通道。所述流体通道包括第一和第二阀,以限定其间的细胞捕获区,使得所述细胞捕获区的容积可以小于所述无菌容器的容积的5%,并且所述无菌容器和细胞捕获区可以构造成使得在所述无菌容器中,所述细胞从所述流体的沉积使所述细胞浓缩在所述细胞捕获区中。这一方面或任何下述方面可以具有任何下述实施方式。所述无菌容器可以适合用于离心。所述细胞收集装置另外或可替选地包括与所述第二阀连通的第二无菌容器和/或用于调控所述第二无菌容器中材料的通道的可移除的夹子。所述第二无菌容器可以是可热密封的和/或袋子。
另一方面,本发明涉及一种细胞收集装置,其具有用于容纳所述细胞的无菌容器,与所述无菌容器连通的流体通道,以及与所述流体通道连通的第二无菌容器。所述流体通道包括细胞捕获区,使得所述细胞捕获区的容积可以小于所述无菌容器的容积的5%,并且所述无菌容器和细胞捕获区可以构造成使得在所述无菌容器中,所述细胞从所述流体的沉积使所述细胞浓缩在所述细胞捕获区中。所述第二无菌容器包括选自由袋子、可热密封的容器和可移除的夹子所组成的组的元件。
另一方面,本发明涉及细胞收集装置,其包括用于接收组织的区室;大小被设置成将所述组织样本切碎成平均横截面不超过4平方毫米的碎片的切削表面;用于容纳所述切碎的组织的悬液的无菌密封容器,所述无菌容器具有比所述用于接收组织的区室的容积大至少10倍的容积;与所述无菌密封容器流体连通的过滤袋;以及与所述过滤袋流体连通的沉积袋。所述过滤袋含有至少一个孔径小得足以持留大于约250μm的粒子的过滤器。所述沉积袋包括有锥形部,以促进沉积的细胞的浓缩。
附图说明
当结合附图阅读时,从下面的各种实施方式的描述中,可以更充分地理解本发明的其他特点和优点以及本发明本身,其中:
图1示意地描绘了根据本发明的实施方式的组织切碎工具;
图2是根据本发明的实施方式的组织切碎工具的实心元件的示意透视图;
图3是图2的实心元件的示意透视图;
图4是部分地示出了根据本发明的实施方式的切削表面的示意透视图;
图5A和5B是部分示出了根据本发明的实施方式的实心元件及其互补区室的示意图;
图6A是根据本发明的另一种实施方式的组织切碎工具的侧视图;
图6B是沿着图6A的组织切碎工具的线E-E的横截面图;
图6C是图6A的组织切碎工具的部件分解图;
图7是根据本发明的又一种实施方式的组织切碎工具的示意透视图;
图8提供了根据本发明的实施方式,用于从组织样本中收集和分离所需细胞的程序步骤的概述;
图9提供了根据本发明的实施方式,用于从组织样本中收集和分离所需细胞的程序步骤的概述;并且
图10A-10G描绘了用于从组织样本中收集和分离所需细胞的程序。
具体实施方式
为了提供本发明的全面理解,现在将描述某些说明性实施方式,包括用于处理细胞的系统和方法。然而,本领域普通技术人员应理解,可以将本文描述的系统和方法进行改造和改良以适用于所针对的应用,并且可以将本文描述的系统和方法使用在其他适合的应用中。应该将所有这样的改造和改良视为在本发明的范围之内。此外应该理解,本文描述的各种实施方式的特点并不是相互排斥的,并且可以以各种不同组合和排列存在。
组织切碎工具
图1示意地描绘了根据本发明的一种实施方式的组织切碎工具10。组织切碎工具10包括:可以收纳并在开始时容纳组织样本的区室12,以及无菌密封容器14。区室12在第一和第二末端16、18之间延伸,而无菌密封容器14本身在第一和第二末端18、20之间延伸。切削表面108位于区室12的第二末端18处,或者等同地,位于无菌密封容器14的第一末端18处,并因此将区室12与无菌密封容器14分隔开。如图所示,组织切碎工具10还包括实心元件100。实心元件100被描绘成部分位于区室12内(如虚影所示)。实心元件100的一部分也被显示为位于区室12外部。在实心元件100的该外部部分上描绘有螺纹105。
图2描绘了组织切碎工具10的实心元件100的实施方式。未示出组织切碎工具10的其他部分(例如,区室12和无菌密封容器14)。实心元件100包括直径较大的柱塞104(示出有螺纹105)和直径较小的螺杆轴106。在实心元件100的一个末端处配置有手柄114。在实心元件100的相反末端处,切削表面108装接于直径较小的螺杆轴106的末端。如图所示,直径较小的螺杆轴106从切削表面108延伸到手柄114(直径较小的螺杆轴106也联结于所述手柄114),并且在这样做时,直径较小的螺杆轴106贯穿直径较大的柱塞104的中空(例如中央)部107。在一种实施方式中,螺杆轴106的特点是沿着其一定长度的螺纹109,并且柱塞104在其中空部107内包括互补的凹槽111。通过这种方式,柱塞104可螺纹地与螺杆轴106螺合。因此,当手柄114旋转时,也引起螺杆轴106旋转,装接于螺杆轴106的末端的切削表面108也(可选地(optionally))旋转。此外,螺杆轴106的旋转引起柱塞104平移,例如朝向切削表面108。因此可以将容纳在柱塞104与切削表面108之间的区室12内的组织样本压缩成与(可选地旋转的)切削表面108相接触,并且正如下面进一步描述的,被其切削。
直径较大的柱塞104的螺纹部105可以与收纳组织样本的区室12的互补的螺纹内部螺合并匹配。柱塞104与区室12之间的螺纹螺合提供了手段和控制力,使得用户可以使用手柄114将柱塞104更容易地在区室12内平移,以及滑动或推动组织样本朝向并通过切削表面108。如图1中所示,柱塞104的大小被设置为与区室12的内部空腔匹配并基本上填充区室12的内部空腔。在一种实施方式中,再次参考图2,可以在柱塞104的一个末端处配置垫圈118。合在一起,垫圈118和柱塞104可以基本上填满区室12的内部空腔的内径,从而在区室12中产生气密的真空密封。垫圈118的形状可以基本上与切削表面108互补。例如,垫圈的底表面和切削表面108的顶表面两者可以都是圆的或平坦的。在一种实施方式中,垫圈118形成平坦表面。当垫圈118接触并驱动组织样本时,组织样本被推进通过切削表面108并因此被切碎。
切削表面108可以是任何表面,其被构造成当组织样本被推动通过切削表面108时,将组织样本切削、分解或分离成较小部分而不损伤来自于组织样本的细胞。例如,切削表面108可以将组织样本切碎成平均横截面不超过4平方毫米或1平方毫米的较小部分,尽管也设想了能够将组织样本切碎成更大或更小部分的切削表面。组织切碎工具可以包括第二切削表面,以进一步减小切碎的组织样本的平均横截面。切削表面的实例包括具有锋利边缘的格栅、横跨开口的多个锋利金属丝、在区室内部的口承上具有多个孔的钢板或盘、在板中偏置并具有锋利边缘的孔以及限定孔隙的表面锋利的网。此外或可替选地,在切削表面限定孔隙的实施方式中,柱塞104的末端可以形成多个突起,例如指状物,该突起与切削表面108的孔隙匹配,以帮助推动组织样本通过切削表面108。在可替选实施方式中,柱塞104的末端可以是平坦的。此外,切削表面108可以具有纹理或可以形成多个突起(例如楔状物),以产生摩擦表面或当向组织样本施加压力时将组织样本保持在切削表面108上。在另一种实施方式中,切削表面108可以包括自动切削系统,例如半自动剪刀。
在一种实施方式中,可以将任选的鼻状螺母(未示出)配置在切削表面108附近,以便当推动组织样本通过它时将切削表面108保持在适当位置。例如,可以将任选的鼻状螺母可移除地装接于收纳组织样本的区室12。任选的鼻状螺母可以包括与区室12的凹陷表面螺合的突起部,以形成卡扣连接。此外或可替选地,任选的鼻状螺母的螺纹部可以螺合区室12的带有类似和互补螺纹的部分。当任选的鼻状螺母与区室12完全螺合时,切削表面108被任选的鼻状螺母的口承配置并保持在适当位置。
图3描绘了组织切碎工具10的实心元件100的透视图。未示出组织切碎工具的其他部分(例如,区室12和无菌密封容器14)。与前述相同,实心元件100包括直径较大的柱塞104(示出有螺纹105)和直径较小的螺杆轴106。在实心元件100的一个末端处配置有手柄114。在实心元件100的相反末端处,切削表面108装接于直径较小的螺杆轴106的末端。在一种实施方式中,如图所示,切削表面108包括靠近切碎盘112的切削刀片110。
图4描绘了组织切碎工具10的示例性切削表面108的透视图。切削表面108包括切削刀片110。另外,切削表面108包括切碎盘112,该切碎盘112具有使组织样本被推进通过其的孔隙116。
图5A和5B描绘了组织切碎工具10的实心元件100的两种实施方式。在图5A中描绘的一种实施方式中,实心元件100的柱塞104在其末端附近的形状基本上是柱形的。在图5B中描绘的第二种实施方式中,实心元件100的柱塞104具有锥形(tapered)或圆锥形(cone-shaped)的末端。在每种实施方式中,实心元件100的形状被设置为与形状互补的区室12匹配并填充到所述区室12,使得实心元件100在区室12内可移动,以推进配置在区室12内的组织样本通过切削表面108。当组织样本通过切削表面108时,其切削部分配置在无菌密封容器14内,所述容器可以是例如袋子。此外或可替选地,区室12的内部空腔可以限定凹陷的通道或表面(例如,凸轮面),以接合从柱塞104凸出的突起部,使得实心元件100可以可移除地紧固于区室12,并且用户仍然有手段和控制力以将实心元件100在区室12内平移(未示出)。
图6A描绘了根据本发明的另一种实施方式的组织切碎工具200的侧视图。图6B描绘了组织切碎工具200的沿着图6A中示出的线E-E的横截面图,而图6C描绘了图6A中示出的组织切碎工具200的部件分解图。组织切碎工具200包括底座204、储液器208和手柄212。如图所示,底座204可以包括螺纹部216,该螺纹部216用于与储液器208可螺纹地螺合。例如,储液器208的内表面的特征可以是具有与底座204的螺纹部216互补的凹槽218。因此,在组织切碎工具200的装配期间,可以将储液器208拧在底座204上。
如图所示,可以将吸盘220联结于底座204的底部224。在一种实施方式中,吸盘220为组织切碎工具200提供了稳定性。例如,在操作中,用户可以使用吸盘220将组织切碎工具200联结于桌面(或其他支撑表面)。由此,当例如下面进一步描述的用户转动手柄212或以其他方式向组织切碎工具200传递力量时,向组织切碎工具200提供了稳定性。
正如在图6B中最清楚地示出的,在储液器208内包括了用于在开始时容纳组织样本的区室228。此外,至少一个切削表面(其通过轴曲柄232联结于手柄212)可以在储液器208内移动。例如,正如在图6C中最清楚地示出的,第一切削表面236、第一切碎器筛网240、第二切削表面244和第二切碎器筛网248(其每个通过轴曲柄232联结于手柄212)可以通过轴曲柄232的驱动(例如旋转)在储液器208内可移动。轴曲柄232可以例如由用户通过手柄212手动驱动,或者可替选地可以通过分开的装置自动地机器驱动。正如本领域普通技术人员将会理解的,第一和第二切削表面236、244可以是上述任何的示例性切削表面。此外,如图所示,第一和第二切碎器筛网240、248可以包括不同尺寸的孔隙。
在运行中,当旋转轴曲柄232时,第一和第二切削表面236、244同样旋转,并在储液器208内朝向容纳在区室228内的组织样本向下移动。第一切削表面236与组织样本发生接触并将其切削成一个或多个更小的部分。那些更小的组织部分随后通过第一切碎器筛网240的孔隙,被第二切削表面244再一次切削成甚至更小的部分,并最终通过第二切碎器筛网248的孔隙。第一和第二切削表面236、244旋转并在储液器208内向下移动,直至基本上所有的组织样本(或至少对于给定应用来说足够量的组织样本)被切碎并通过第二筛网248。在通过第二筛网248后,切碎的和组织样本被收集并容纳在储液器208的容器252内。尽管没有如此描绘在图6A-6C中,但储液器208的顶部事实上可以被封顶,并且储液器208的内部灭菌,使得容器252是无菌密封容器252。
正如本领域普通技术人员将会理解的,并且如上所述,储液器208的区室228如图6B中所示,位于第一和第二切削表面236、244以及第一和第二切碎器筛网240、248下方,而储液器208的无菌密封容器252位于第一和第二切削表面236、244以及第一和第二切碎器筛网240、248上方。因此,在图6A-6C中所描绘的组织切碎工具200的实施方式中,区室228和无菌密封容器252的尺寸随着第一和第二切削表面236、244向下(或向上)旋转而改变。
也正如本领域普通技术人员将会理解的,图6A-6C中的组织切碎工具200的图示是非限制性的。事实上,设想了多种改变、修改和其他实现方案。例如,可以采用更少或超过两个切削表面236、244和/或两个切碎器筛网240、248。作为另一个实例,可以将轴曲柄232与手柄212联结,使得手柄212可以在竖直平面而不是水平平面内旋转(如所示)。
图7描绘了根据本发明的实施方式的另一个视图的组织切碎工具300,其操作原理与图6A-6C中描绘的组织切碎工具200相似。与前述相同,组织切碎工具300包括底座304、储液器308和手柄312。如图所示,通过使用螺丝315和翼形螺母317将储液器308的顶部联结于其底部。组织切碎工具300还包括吸盘320,以在操作期间向工具300提供上述的稳定性。还示出了在通过例如第二筛网348后将切碎的组织样本收集在其中的储液器308的容器352。与前述相同,储液器308的顶部可以被封顶,并且储液器308的内部灭菌,使得容器352是无菌密封容器352。
细胞分离和收集方法
本发明还提供了用于组织的高效和无菌处理,以分离并收集靶细胞的方法。图8提供了用于分离和收集细胞的程序步骤的概述。一般来说,一开始,可以使用任何上述的组织切碎工具,通过将组织样本推进通过工具的切削表面并进入无菌密封容器中,将组织样本切碎。本发明还提供了通过将组织样本暴露于化学物质或酶来进一步消化所述组织样本的任选方法。例如,可以通过将酶注入到容器中以使酶消化切碎的组织,来消化切碎的组织。酶可以是蛋白酶,例如分开或组合的胶原酶、透明质酸酶或分散酶。这些步骤被另外地或任选地合并到将切碎的和/或酶消化的组织样本与任何较大碎片(如上所述的“未消化的组织”)分离开的方法中,所述方法例如倾析、吸取、沉积或优选为过滤。在某些实施方式中,在分离步骤之前,对可能是粘稠的切碎和/或酶消化的组织进行洗涤或稀释。通过从含有切碎和/或酶消化的组织的混合物中沉积细胞,可以实现靶细胞从切碎和/或酶消化的组织的分离。尽管可以使用重力沉积,但可以通过例如离心来加速沉积过程。此外并且可替选地,将靶细胞移动到无菌容器中冷冻保存,供日后使用。
在一种实施方式中,用于将切碎和/或酶消化的组织样本与未消化的组织分开的方法可以包括如图9中所描绘的两个或更多过滤步骤。例如,可以使用不同尺寸的过滤器,对切碎和/或酶消化的组织样本进行多个过滤步骤。在一种实施方式中,首先使用例如约500微米、约250微米、约150微米或约100微米的大孔过滤器对切碎和/或酶消化的组织样本进行第一过滤步骤,用于除去粗的未消化的组织。此外,可以使用例如约70微米或约40微米的小孔过滤器进行第二过滤步骤以过滤来自于第一过滤步骤的洗出物,用于除去另外的污染物例如胶原蛋白纤维。由于切碎和/或酶消化的组织通常是粘稠的,因此可以在过程中的任何阶段用适合的无菌溶液(例如缓冲盐溶液)洗涤或稀释组织。例如,在第一过滤步骤后已将切碎和/或酶消化的组织与未消化的组织分离开之后,可以在第二过滤步骤之前进行进一步洗涤,以进一步清洁切碎和/或酶消化的组织。在多轮过滤之后,可以通过沉积来收集基本上不含组织样本的靶细胞。
图10A描绘了用于从组织样本收集和分离所需细胞的示例性程序。一开始,可以将组织样本置于区室内,可以在区室将组织样本切碎、分解或分离成较小部分。在任何酶消化之前切碎组织样本的优点在于增加酶可以作用于其上的组织样本的总表面积。可以将区室安装并装接于容器(例如消化袋)的一个端口(例如孔隙),使得导入到区室中的组织样本可以直接通过进入到容器中。可以将或不将区室可移除地装接于容器。
容器限定了容纳切碎的组织样本和流体的无菌、密封的内部空间。容器可以包括用于导入或分发材料和流体进入或离开容器的密封端口。例如,容器可以包括用于导入流体的一个或多个注入端口,和用于从容器分发或吸出流体和材料的一个或多个抽取端口。此外,在可替选实施方式中,每个注入端口和抽取端口可以构造成使得流体和材料只能以一个方向移动进出容器。此外,端口可以配置在容器的与区室相反的末端处,尽管端口也可以沿着容器外周的任何部分配置。在一种实施方式中,端口不被可移除地紧固于容器。此外或可替选地,可以将注射器、排气孔、加盖排气孔或与鲁尔接头匹配的其他装置装接于端口。所有端口可以用拭子(swabbable)擦拭,以便维持无菌性。
随后,可以通过例如将切碎的组织暴露于化学物质或酶,任选地对其进行消化。在一种实施方式中,可以通过酶例如蛋白酶,例如分开或组合的胶原酶、透明质酸酶或分散酶,将切碎的组织消化。酶可以被直接导入到容器中,以使酶消化切碎的组织。例如,可以将注射器或可以容纳流体、材料或空气的任何其他装置连接到容器(例如通过鲁尔接头),并将其用于将例如蛋白酶分发到容器中,以消化切碎的组织样本。为了增强切碎的组织样本的消化,可以将容器颠倒以使酶在容器各处流通。取决于酶分解切碎的组织样本的速率,可以将容器静置并且可以将切碎的组织样本与酶在37℃下温育一段时间,例如约1至3小时,尽管可以设想更长或更短的时间,以消化切碎的组织样本。此外或可替选地,为了辅助温育过程,可以任选地用定轨摇床将容器定期混合或通过一系列滚筒或其他加压型装置移动,以协助切碎的组织样本在容器内的分解。在组织样本约为10mL的实例中,用户可以将约10mL酶注入到容器中,尽管可以设想更多或更少的酶。一旦切碎的组织样本被消化后,得到约20-30mL消化的组织样本。
在从切碎和/或酶消化的组织分离细胞之前,任选地除去任何残留的未消化组织的碎片,以便于随后的细胞纯化。取决于它们的尺寸,可以通过例如物理提取、倾析、吸取、沉积或优选地过滤来除去未消化的组织。任选地,被除去的未消化的组织可以被储存和/或用于其他目的,例如扩增干细胞的接种源。
图10A-10D示出了通过过滤来实现分离的各种实施方式。具体来说,图10A-10D描绘了将容纳消化的组织样本的容器连接到可以可移除地装接于容器的过滤单元的流体通道。过滤单元可以使用单个过滤器或多个任选地尺寸逐渐减小的过滤器。或者,可以将过滤器安装并配置在容器中,以便将容器分成两个子空间。可以将过滤器对称或不对称地放置在容器内。此外或可替选地,可以将过滤器安装在端口例如抽取端口内。取决于应用,过滤器的尺寸可以为约500微米、约250微米、约150微米、约100微米、约70微米、约40微米或其任何范围。在过滤之前,可以将可能是粘稠的消化的组织样本稀释,以便得到的组织样本能够更容易地移动通过过滤器,进入下游容器或用于进一步处理的部件。稀释溶液的实例包括磷酸盐缓冲盐水(PBS)、5%人血清白蛋白、盐水、羟乙基淀粉和新鲜血浆(例如自体血浆)。在一种实施方式中,使用注射器或能够容纳流体的任何其他装置,通过注入端口将稀释溶液分发到容器中。在消化的组织样本约为20-30mL的实例中,用户可以将约250mL稀释溶液注入到容器中,尽管可以设想更多或更少的溶液。结果,容器容纳约250-300mL稀释的消化的组织样本。在过滤后,可以例如通过真空、抽吸或重力,将洗出物经优选地通过线夹(例如蝴蝶线夹)调控的流体通道推进到第二无菌容器(例如清洗/离心袋)中。
从稀释的切碎和/或酶消化的组织分离细胞,可以通过各种机制来实现。在一种实施方式中,通过沉积从稀释的切碎和/或酶消化的组织分离靶细胞。尽管可以使用重力沉积,但可以通过例如离心来加速沉积过程。本发明可以包括定制的离心桶、插件和配重,以确保系统的正确离心。
沉积从稀释的切碎和/或酶消化的组织样本分离靶细胞。为了便于细胞收集,任选地通过出口端口和优选地通过线夹调控的流体通道除去基本上不含细胞的上清液。上清液可以通过例如倾析或抽吸来去除。在第二无菌容器是可压缩袋的实例中,可以通过对袋子进行物理加压来倾析上清液。或者,可以例如通过真空、抽吸或重力来除去上清液。任选地,可以将上清液移除到废液容器中,所述废液容器通过出口端口和通过线夹调控的流体通道连接到第二无菌容器。在一种实施方式中,被移除的上清液可以被储存和/或用于其他目的,例如维持细胞(在培养中)。
为了收集靶细胞,可以加入小体积的稀释溶液(例如20ml自体血浆),以重悬可能收集在第二无菌容器的底部处的细胞沉淀物。如图10A中描绘的实施方式中所示,第二无菌容器可以具有以一定角度变细的底部,其足以促进靶细胞移动到位于容器底部处的流体通道中,并任选地进入转移容器(例如,转移袋)中。或者,如图10B中所描绘的,可以将靶细胞移动到位于容器侧面处的流体通道中,并任选地进入转移容器中。细胞离开第二无菌容器并进入流体通道和任选地进入转移容器的移动,可以通过真空或抽吸来促进,并且可以通过线夹来调控。
如果需要,纯化的靶细胞可以立即使用。然而,通常将细胞冷冻保存以供日后使用。为了实现长期储存,可以将细胞从任选的转移容器转移到适合于冷冻的可密封无菌容器(例如冷冻袋)中。或者,可以将细胞从第二无菌容器直接收集在可冷冻容器中,供日后使用。为了协助靶细胞的储存和保存,加入冷冻保护剂,所述冷冻保护剂可以包括例如分开或组合的二甲基亚砜(DMSO)、白蛋白和/或葡聚糖。可以在沉积后向第二无菌容器内的细胞加入冷冻保护剂。或者,可以向任选的转移容器内或可冷冻容器内的细胞加入冷冻保护剂并与其混合,用于长期储存和日后使用。
在一种实施方式中,用于将切碎和/或酶消化的组织与未消化的组织分离开的方法,可以如图10C-10D中所描绘地包括两个或更多过滤步骤。例如,可以对切碎和/或酶消化的组织进行第一过滤步骤,以除去粗的、未消化的组织。由于切碎和/或酶消化的组织通常是粘稠的,因此可以在过程中的任何阶段用适合的无菌溶液清洗或稀释组织。例如,在第一过滤步骤后已将切碎和/或酶消化的组织与未消化的组织分开之后,可以在第二过滤步骤之前进行进一步清洗,以进一步清洁组织。在一种实施方式中,第二过滤步骤可以利用尺寸较小的过滤器,以便从切碎和/或酶消化的组织移除污染物例如胶原蛋白纤维。在第二过滤步骤后,可以通过沉积来收集靶细胞,并通过位于容器底部处(图10C)或容器侧面处(图10D)的流体通道将其移动到任选的转移袋中。或者,可以将细胞直接收集到无菌冷冻袋中,用于长期储存和日后使用。
用于分离切碎的组织样本的其他示例性过程描绘在图10E-10G中。在每个这些过程中,将组织样本置于切碎机例如图7的切碎机中。在操作中,切碎机迫使组织样本通过一个或多个切削表面,并将细细切碎的组织沉积在切削表面的另一个侧面上。提供盐水袋以允许将组织冲出切碎机;为此目的,通常可以使用多达500mL盐水。当从切碎机冲出时,切碎的组织可以流入到任选的消化袋(如所示)中,在所述消化袋中可以在进一步处理之前对切碎的组织进行酶消化(如参考图10A-10D所述)。任选的消化袋与稀释袋流体连通。或者,如果机械切碎消除了对任何酶消化的需求,则切碎的组织可以直接流入到稀释袋中。机械切碎的组织(不论是否经历酶消化)可能是粘稠的。可以对稀释袋进行机械操作,以促进组织与盐水的混合。稀释袋也装配有任选的注入端口,允许根据需要将另外的盐水注入到稀释袋中。
然后,一旦将粘度充分降低后,对组织悬液进行过滤。如图10E-G中所示,悬液从稀释袋通过并进入到具有至少一个袋内过滤器的过滤袋。图10E描绘了具有单一袋内过滤器的实施方式,所述过滤器持留大于约40-70μm的粒子。图10F描绘了具有单一袋内过滤器的实施方式,所述过滤器持留大于约150-250μm的粒子。在图10F中,来自于袋内过滤器的滤液然后通过第二在线过滤单元,其持留大于约40-70μm的粒子。图10G描绘了过滤袋含有两个连续的袋内过滤器的实施方式,每个袋内过滤器具有至少300cm2的表面积;第一过滤器持留大于约500μm的粒子,第二过滤器持留大于约100μm的粒子。在每个图10E-G中,过滤袋包括允许从第一过滤器除去截留物的端口。该截留物可以任选地作为组织外植体用于培养细胞。
图10E-G中的滤液通入到离心袋中,例如图10A-D中所示的离心袋。通过沉积(例如通过离心)从悬液分离细胞,并将细胞浓缩在袋子的底部中或与袋子的底部相连的流体通道中。可以通过任选地与废液容器相连的管道,来移除上清液(例如通过倾析、吸取、真空、抽吸或通过挤压袋子)。上清液可用于其他目的,例如维持培养物中的细胞。
为了收集靶细胞,可以加入小体积的稀释溶液(例如,20ml自体血浆)以重新悬浮沉积的细胞。如图10E-G中所示,任选地在通过第二过滤袋、例如在图10G中所示的含有表面积为至少100cm2并持留大于约40μm的粒子的过滤器的第二过滤袋之后,重新悬浮的细胞可以从离心袋通过进入到转移袋中。如上对图10A-D所述,可以将细胞转移到冷冻袋,并且可以加入一种或多种冷冻保护剂例如DMSO、白蛋白和/或葡聚糖。
本文描述的方法对于从各种实体组织纯化细胞来说是有效的。例如,本文描述的方法可以从脂肪组织或胞衣组织例如胎盘或脐带组织或更具体地包含脐带胶样组织的组织中分离细胞,例如干细胞。纯化的脐带胶样组织干细胞可用于治疗或再生各种组织中的任一种,例如骨骼、软骨、脂肪或肌肉。这些细胞也可以促进造血移植物植入,并具有在宿主中调控和抑制免疫应答的潜力。
除了纯化的细胞之外,本文描述的方法还产生其他有用产品。例如,当从切碎和/或酶消化的组织分离细胞时,剩余的缺失了细胞的组织是丰富的无菌溶液,其可用于维持细胞(例如在培养物中)。此外,在消化过程后残留的未消化的组织的任何碎片也可能是有用的。例如,未消化的脐带组织可用作接种源,用于间充质干细胞的扩增。
在本文中使用的术语和表述被用作描述而非限制性的术语和表述,并且在这样的术语和表述的使用中,不意图排除所示出和描述的特点或其部分的任何等同物。此外,尽管已描述了本发明的某些实施方式,但对于本领域普通技术人员来说,显然可以使用合并本文公开的概念的其他实施方式,而不背离本发明的精神和范围。因此,所描述的实施方式在所有方面应该被当作仅仅是说明性而非限制性的。此外,本文中描述的构造旨在作为说明性而决不是限制性的。同样,尽管出于解释的目的已提供了物理解释,但不意图受到任何特定理论或机制的限制或按照它来限制权利要求项。
参考文献并入
本文中引用的每个专利文献和学术文章的全部公开内容,以其全文为所有目的通过引用并入本文。
等同性
本发明可以以其他特定形式体现而不背离其精神或本质特征。因此,上述实施方式在所有情况下被当作对本文描述的发明的说明而不是限制。因此,本发明的范围由随附的权利要求书而不是上面的描述来指明,并且意图将在权利要求书的等同性意义和范围之内的所有改变涵盖在其中。

Claims (27)

1.一种组织切碎工具,包括:
区室,该区室用于容纳组织样本;
实心元件,该实心元件能够被手柄驱动并且能够在所述区室内移动;
可旋转切削表面,该可旋转切削表面在所述区室的一个末端处;以及
无菌密封容器,
其中,所述区室布置成将所述组织样本定位于所述实心元件和所述可旋转切削表面之间,并且所述手柄在一个方向上的驱动使所述实心元件仅朝可旋转切削表面移动,并且
其中,所述可旋转切削表面将所述区室与所述无菌密封容器分隔开,使得经由实心元件推压接触所述可旋转切削表面并通过该可旋转切削表面的组织样本作为切碎的组织沉积在所述无菌密封容器内。
2.如权利要求1所述的组织切碎工具,其中,所述可旋转切削表面的尺寸被设置为将所述组织样本切碎成平均横截面不超过4平方毫米的碎片。
3.如权利要求2所述的组织切碎工具,其中,所述平均横截面不超过1平方毫米。
4.如权利要求2所述的组织切碎工具,还包括用于减小所述碎片的平均横截面的第二切削表面。
5.如权利要求1所述的组织切碎工具,其中,所述可旋转切削表面包括自动切削系统。
6.如权利要求1所述的组织切碎工具,还包括位于所述可旋转切削表面附近的至少一个切碎器筛网。
7.如权利要求6所述的组织切碎工具,其中所述至少一个切碎器筛网能够向所述组织样本移动。
8.如权利要求1所述的组织切碎工具,还包括用于在所述组织切碎工具运行期间使所述组织切碎工具稳定的吸盘。
9.如权利要求1所述的组织切碎工具,还包括与所述无菌密封容器连通的流体导管和配置在所述流体导管内的过滤器。
10.如权利要求1所述的组织切碎工具,其中,所述无菌密封容器包括至少一个密封的进入端口,允许将流体无菌地导入到所述容器中。
11.如权利要求1所述的组织切碎工具,其中,所述区室的内表面带有螺纹。
12.如权利要求1所述的组织切碎工具,还包括用于密封所述区室的垫圈。
13.如权利要求1所述的组织切碎工具,其中,所述区室靠近其末端的部分具有基本上恒定的横截面。
14.如权利要求1所述的组织切碎工具,其中,所述区室靠近其末端的部分为锥形。
15.如权利要求13所述的组织切碎工具,其中,所述实心元件被造型成匹配并填充所述区室靠近其末端的部分。
16.如权利要求1所述的组织切碎工具,还包括用于使所述可旋转切削表面朝向所述组织样本移动的轴曲柄。
17.如权利要求1所述的组织切碎工具,其中,所述可旋转切削表面能够向所述组织样本移动。
18.如权利要求1所述的组织切碎工具,其中,所述组织切碎工具在所述区室的一个末端包括一系列可旋转切削表面。
19.一种切碎组织样本的方法,所述组织样本定位于权利要求1所述的组织切碎工具的所述实心元件和所述可旋转切削表面之间,所述方法包括:
通过所述实心元件推压所述组织样本以与所述组织切碎工具的所述可旋转切削表面接触并通过所述可旋转切削表面。
20.一种消化组织样本的方法,所述方法包括:
如权利要求19所述的方法切碎所述组织样本;以及
注入酶,由此所述酶消化所述切碎的组织。
21.如权利要求20所述的方法,其中,所述酶是胶原酶。
22.一种从组织样本分离细胞的方法,所述方法包括:
如权利要求19所述的方法切碎所述组织样本;以及
除去未消化的组织。
23.如权利要求22所述的方法,还包括稀释所述组织样本,其中,随后通过过滤除去所述未消化的组织。
24.如权利要求23所述的方法,还包括沉淀通过所述过滤产生的滤液。
25.如权利要求24所述的方法,还包括重悬沉淀的细胞并且过滤所述重新悬浮的沉淀细胞。
26.如权利要求19所述的方法,其中,所述组织样本包含脐带胶样组织干细胞。
27.如权利要求26所述的方法,其中,所述组织样本基本上不含血管。
CN201280055019.5A 2011-11-08 2012-11-08 用于处理细胞的系统和方法 Active CN103997974B (zh)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US201161557127P 2011-11-08 2011-11-08
US61/557,127 2011-11-08
PCT/US2012/064130 WO2013070899A1 (en) 2011-11-08 2012-11-08 Systems and methods for processing cells

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN103997974A CN103997974A (zh) 2014-08-20
CN103997974B true CN103997974B (zh) 2016-06-08

Family

ID=48290538

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201280055019.5A Active CN103997974B (zh) 2011-11-08 2012-11-08 用于处理细胞的系统和方法

Country Status (14)

Country Link
US (5) US8893995B2 (zh)
EP (1) EP2775928B1 (zh)
JP (1) JP6159729B2 (zh)
KR (1) KR102001701B1 (zh)
CN (1) CN103997974B (zh)
AU (1) AU2012335746B2 (zh)
CA (1) CA2862437C (zh)
DK (1) DK2775928T3 (zh)
ES (1) ES2725564T3 (zh)
IL (1) IL232290A (zh)
PL (1) PL2775928T3 (zh)
PT (1) PT2775928T (zh)
SG (1) SG11201402149TA (zh)
WO (1) WO2013070899A1 (zh)

Families Citing this family (33)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AUPR298901A0 (en) 2001-02-07 2001-03-08 McComb Foundation, Inc., The Cell suspension preparation technique and device
ES2634545T3 (es) 2010-06-01 2017-09-28 Auxocell Laboratories, Inc. Células madre nativas de la gelatina de Wharton y su purificación
AU2013205148B2 (en) * 2013-03-14 2014-10-30 AVITA Medical Americas, LLC Systems and methods for tissue processing and preparation of cell suspension therefrom
US8871159B1 (en) * 2013-12-17 2014-10-28 Christian Apfel Preparation of cells, cell aggregates and tissue fragments
ITRM20130713A1 (it) * 2013-12-23 2015-06-24 Roberta Foglia Dispositivo per la movimentazione ed il trasporto di un bulbo oculare.
EP3102031B1 (en) 2014-02-05 2022-01-19 Muffin Incorporated Compartmented cryopreservation container and uses thereof
WO2015161057A1 (en) * 2014-04-18 2015-10-22 Auxocell Laboratories, Inc. Systems and methods for processing cells
USD748462S1 (en) 2014-08-11 2016-02-02 Auxocell Laboratories, Inc. Centrifuge clip
US9993748B2 (en) 2014-08-11 2018-06-12 Auxocell Laboratories, Inc. Centrifuge clip and method
CN104472474A (zh) * 2014-11-21 2015-04-01 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 一种人脂肪间充质干细胞冻存液
DK3233289T3 (da) 2014-12-15 2020-05-25 Human Brain Wave S R L Anordning til sønderdeling af biologisk materiale og tilsvarende fremstillingsfremgangsmåde og fremgangsmåde til fremstilling af cellesuspensioner og vævsmikrotransplantater
GB201522097D0 (en) 2015-12-15 2016-01-27 Cellular Therapeutics Ltd Cells
AU2017228458A1 (en) * 2016-03-04 2018-09-13 The Board Of Regents Of The University Of Texas System Devices and methods for umbilical cord processing
DE102016114043B3 (de) * 2016-07-29 2017-08-10 Technische Universität Dresden Vorrichtung zur Isolierung von Stammzellen aus fötalen Geweben
JP2019528728A (ja) * 2016-09-29 2019-10-17 高雄醫學大學Kaohsiung Medical University 組織から細胞を分離する装置
TWI598150B (zh) 2016-09-30 2017-09-11 財團法人工業技術研究院 硏磨機及微旋迴轉裝置
GB201700621D0 (en) * 2017-01-13 2017-03-01 Guest Ryan Dominic Method,device and kit for the aseptic isolation,enrichment and stabilsation of cells from mammalian solid tissue
CN108424832B (zh) * 2017-02-15 2021-10-08 Scl生物科技有限公司 具有组织细碎装置的设备
US10996146B2 (en) * 2017-06-01 2021-05-04 Becton, Dickinson And Company Devices for dissociating a biological tissue sample and methods of use thereof
JP6286094B1 (ja) * 2017-07-05 2018-02-28 セルソース株式会社 細胞組織を含む流動体のための剪断装置
JP7402523B2 (ja) * 2017-09-01 2023-12-21 ユニバーシティ オブ ピッツバーグ - オブ ザ コモンウェルス システム オブ ハイヤー エデュケイション 脂肪組織移植片の保存のための方法およびキット
US11723635B2 (en) 2017-09-05 2023-08-15 The Board Of Regents Of The University Of Texas System Devices and methods for umbilical cord processing
CN111902528A (zh) * 2018-01-24 2020-11-06 弗劳恩霍夫应用研究促进协会 用于组织解离的装置及方法
CN108444745A (zh) * 2018-03-19 2018-08-24 马奔腾 一种便常规检验方法
US20200072712A1 (en) * 2018-08-29 2020-03-05 Predictive Technology Group, Inc. Tissue mincers, related systems, and related methods
US11033295B2 (en) 2019-05-06 2021-06-15 Tissuemill Technologies Llc Atraumatically formed tissue composition, devices and methods of preparation and treatment
KR102487903B1 (ko) * 2019-06-02 2023-01-12 (주)카스 인 바이오 연질 생체 조직을 미립자화하는 방법 및 이의 방법으로 제조된 연질 생체 조직 미립자 이식편
CN110646233B (zh) * 2019-11-22 2020-04-07 广州赛太特生物医学科技有限公司 一种细胞诊断用定量取样装置
WO2021123832A1 (en) 2019-12-20 2021-06-24 Instil Bio (Uk) Limited Devices and methods for isolating tumor infiltrating lymphocytes and uses thereof
CN111134336B (zh) * 2020-01-16 2022-11-15 吉林农业科技学院 一种火龙果果皮活性成分的提取装置
CN113994187A (zh) * 2020-01-20 2022-01-28 基因追踪生物实验室公司 用于切碎生物组织的方法和装置
US11786266B2 (en) 2020-02-14 2023-10-17 Arthrex, Inc. Variable particle size tissue collector
WO2023209039A2 (en) 2022-04-27 2023-11-02 Gerlach, Jörg C. Tissue structure isolation using a micro-cutting device and uses of resulting micro-cubes of tissue

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN2340373Y (zh) * 1997-10-31 1999-09-29 山东医科大学附属医院 一种旋切活检针
TW200520845A (en) * 2003-12-31 2005-07-01 Ind Tech Res Inst Tissue pulverizer
CN101543413A (zh) * 2008-03-27 2009-09-30 德普伊米特克公司 组织提取和收集装置

Family Cites Families (91)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3380499A (en) 1966-05-05 1968-04-30 Army Usa Pulsating tissue-homogenizer
GB1152418A (en) 1967-01-30 1969-05-21 Brown Electronics Ltd Ag An Improved Homogeniser
US3666187A (en) 1970-05-13 1972-05-30 Us Health Education & Welfare Laboratory homogenizer
US4151959A (en) 1978-01-30 1979-05-01 Clifford E. Rawlings Apparatus for comminuting pulverizable material
US4307846A (en) 1979-10-09 1981-12-29 Spelsberg Thomas C Continuous flow tissue homogenizer
US4509695A (en) 1983-07-18 1985-04-09 Spectrum Medical Industries, Inc. Tissue pulverizer
JPS6143982A (ja) 1984-08-07 1986-03-03 Yamato Scient Co Ltd 連続流動式ホモジナイザ
JPS6143981A (ja) 1984-08-07 1986-03-03 Yamato Scient Co Ltd 連続流動式ホモジナイザ
US4828395A (en) 1985-02-21 1989-05-09 Yamato Scientific Company, Limited Continuous flow type homogenizer
US6863431B2 (en) 1992-03-30 2005-03-08 Omni International, Inc. Disruptor device which eliminates cross contamination
EP0590219A1 (de) 1992-10-02 1994-04-06 SULZER Medizinaltechnik AG Verfahren zum Zerkleinern von weichem Gewebe und Mittel zum Durchführen des Verfahrens
JPH06143981A (ja) 1992-10-30 1994-05-24 Nippondenso Co Ltd 車両用即効暖機装置
JPH06143982A (ja) 1992-11-04 1994-05-24 Matsushita Electric Ind Co Ltd 車両用補助暖房装置
IT1260682B (it) * 1993-09-28 1996-04-22 Consult T S S N C Di Roggero G Dispositivo trituratore meccanico di materiale biologico
DE19729028C1 (de) * 1997-07-08 1999-05-06 Fraunhofer Ges Forschung Vorrichtung sowie Verfahren zur Isolierung von Zellmaterial aus einem Gewebeverband und/oder einer Flüssigkeit
US6120474A (en) 1997-12-15 2000-09-19 Nissho Corporation Blood component-recovering apparatus and a method for recovering blood components using the same
US6471392B1 (en) 2001-03-07 2002-10-29 Holl Technologies Company Methods and apparatus for materials processing
US7399633B2 (en) 2000-10-27 2008-07-15 Fred Hutchinson Cancer Research Center Methods for immortalizing cells
US6634577B2 (en) 2000-12-20 2003-10-21 Tsukuba Food Science, Inc. Crusher, process for preparing and testing materials and apparatus therefor
WO2002081007A2 (en) 2001-04-09 2002-10-17 Medtronic, Inc. Methods of isolating blood components using a centrifuge and uses thereof
US6579219B2 (en) 2001-04-09 2003-06-17 Medtronic, Inc. Centrifuge bag and methods of use
WO2002088296A1 (en) 2001-04-26 2002-11-07 Boston Biomedica, Inc. Multichamber device and uses thereof for processing of biological samples
WO2002089989A1 (fr) 2001-05-07 2002-11-14 Epcon Co., Ltd. Dispositif de melangeage, concassage et pulverisation et procede de pulverisation de substances au moyen dudit procede
US20030054331A1 (en) 2001-09-14 2003-03-20 Stemsource, Inc. Preservation of non embryonic cells from non hematopoietic tissues
EP1921133B1 (en) 2001-12-07 2015-05-20 Cytori Therapeutics, Inc. System for processing lipoaspirate cells
US20030161818A1 (en) * 2002-02-25 2003-08-28 Kansas State University Research Foundation Cultures, products and methods using stem cells
US7241281B2 (en) 2002-04-08 2007-07-10 Thermogenesis Corporation Blood component separation method and apparatus
US7060494B2 (en) 2002-04-09 2006-06-13 Reliance Life Sciences Pvt. Ltd. Growth of human Mesenchymal Stem Cells (hMSC) using umbilical cord blood serum and the method for the preparation thereof
NZ518432A (en) 2002-04-16 2004-09-24 Agres Ltd A homogeniser and method of cleaning same.
US20040158226A1 (en) * 2003-02-07 2004-08-12 Genoptix, Inc. Syringe tissue sieve
JP4790592B2 (ja) 2003-02-11 2011-10-12 ダビース,ジヨン・イー ヒト臍帯のウォートンジェリーからの前駆細胞
US7794408B2 (en) * 2003-03-28 2010-09-14 Ethicon, Inc. Tissue collection device and methods
US20040197375A1 (en) 2003-04-02 2004-10-07 Alireza Rezania Composite scaffolds seeded with mammalian cells
US20040203142A1 (en) 2003-04-14 2004-10-14 Reliance Life Sciences Pvt. Ltd. Growth of neural precursor cells using umbilical cord blood serum and a process for the preparation thereof for therapeutic purposes
US6817750B1 (en) 2003-08-26 2004-11-16 Homeland Housewares, Llc Individualized blender
US7441944B2 (en) * 2003-08-26 2008-10-28 Homeland Housewares, Llc Drinking extension for blender container
US7611473B2 (en) 2003-09-11 2009-11-03 Ethicon, Inc. Tissue extraction and maceration device
US7052172B2 (en) 2003-09-15 2006-05-30 Omni International, Inc. Combination low-shear mixer and high-shear homogenizer
US7749741B2 (en) 2003-09-22 2010-07-06 Battelle Memorial Institute Tissue dissociation device
IE20030856A1 (en) 2003-11-14 2005-06-15 Enfer Technology Ltd Sample homogeniser
US7172334B2 (en) 2003-12-11 2007-02-06 Conair Corporation Hand held blender
US20050229795A1 (en) * 2004-04-20 2005-10-20 Priscilla Stuckey Battery operated portable juicer and blender
EP1839027B1 (de) 2005-01-21 2016-10-19 Medic Tools AG Einwegmischer, -homogenisator, -extrahierer, -fraktionierer oder -aufschlämmer
US7923007B2 (en) 2005-08-08 2011-04-12 Academia Sinica Brain tissue damage therapies
US9057052B2 (en) 2005-10-21 2015-06-16 Kaneka Corporation Stem cell separating material and method of separation
CA2629283A1 (en) 2005-11-14 2007-05-24 The New England Medical Center Hospitals, Inc. Methods for preparing cord matrix stem cells (cmsc) for long term storage and for preparing a segment of umbilical cord for cryopreservation
SG10201401805YA (en) 2005-12-22 2014-08-28 Jane Ennis Viable cells from frozen umbilical cord tissue
EP1889654A1 (en) 2006-02-03 2008-02-20 Wockhardt Limited Silicone oil-in-water emulsions-formulation, production and use
WO2007099534A2 (en) 2006-03-01 2007-09-07 The Regenerative Medicine Institute Compostions and populations of cells obtained from the umbilical cord and methods of producing the same
JP5259929B2 (ja) * 2006-04-25 2013-08-07 株式会社カネカ 脂肪組織から幹細胞を採取するのに適した細胞分離装置、およびその方法
CA2649234C (en) 2006-05-04 2015-07-14 Pierluigi Reschiglian Method and device to fractionate stem cells
EP2013333A2 (en) 2006-05-04 2009-01-14 GE Healthcare Bio-Sciences AB Separation of cells
US20090081171A1 (en) 2006-08-11 2009-03-26 Yu-Show Fu Cell system for alleviating syndromes of Parkinson's disease in a mammal
US8105634B2 (en) 2006-08-15 2012-01-31 Anthrogenesis Corporation Umbilical cord biomaterial for medical use
US8071135B2 (en) 2006-10-04 2011-12-06 Anthrogenesis Corporation Placental tissue compositions
KR20080037883A (ko) 2006-10-27 2008-05-02 세원셀론텍(주) 메디컬 키트 및 이의 사용방법
US20080118477A1 (en) 2006-11-09 2008-05-22 Rush University Medical Center Umbilical cord mesenchymal stem cells support cord blood hematopoiesis
WO2008060037A1 (en) 2006-11-15 2008-05-22 Seoul National University Industry Foundation Method for the simultaneous primary-isolation and expansion of endothelial stem/progenitor cell and mesenchymal stem cell derived from mammal including human umbilical cord
US20080132803A1 (en) 2006-11-30 2008-06-05 Hyman Friedlander Method and system for doing business by mining the placental-chord complex
AU2007332799A1 (en) 2006-12-07 2008-06-19 Teva Pharmaceutical Industries Ltd. Method of generation and expansion of tissue-progenitor cells and mature tissue cells from intact bone marrow or intact umbilical cord tissue
US20080305148A1 (en) 2007-03-19 2008-12-11 National Yang Ming University Treatment of spinal injuries using human umbilical mesenchymal stem cells
US20110002883A1 (en) 2007-04-10 2011-01-06 Petrikovsky Boris M Therapeutic preparations containing wharton's jelly
US20090068153A1 (en) 2007-09-06 2009-03-12 Vitelli Francesca P Cell composition for tissue regeneration
CA2736663C (en) 2007-09-07 2018-01-02 Surgical Biologics, Llc. Placental tissue grafts and improved methods of preparing and using the same
US20090074731A1 (en) 2007-09-13 2009-03-19 Librach Clifford L Method of isolation and use of cells derived from first trimester umbilical cord tissue
CN102014935B (zh) 2008-02-28 2012-10-10 亨利福特保健系统公司 用基质细胞增强对中枢神经系统损伤的治疗的组合物和方法
US20090232781A1 (en) 2008-03-13 2009-09-17 Yu-Show Fu Treatment of liver diseases through transplantation of human umbilical mesenchymal stem cells
US20090232782A1 (en) 2008-03-14 2009-09-17 Yu-Show Fu Method for treating brain ischemic injury through transplantation of human umbilical mesenchymal stem cells
US20090291061A1 (en) 2008-05-21 2009-11-26 Riordan Neil H Stem cell therapy for blood vessel degeneration
US20100098675A1 (en) 2008-05-30 2010-04-22 Nikolai Tankovich Methods for reducing the side effects of ophthalmic laser surgery
WO2010021993A1 (en) * 2008-08-19 2010-02-25 Cytori Therapeutics, Inc. Methods of using adipose tissue-derived cells in the treatment of the lymphatic system and malignant disease
BRPI0822802A2 (pt) 2008-10-10 2015-09-01 Histocell Sl Biomaterial na forma de hidrogel injetável, biomaterial derivado do cordão umbilical humano, processo para a obtenção do biomaterial, processo para a obtenção do biomaterial obtido e uso do biomaterial
AU2009316541B2 (en) 2008-11-19 2015-08-06 Celularity Inc. Amnion derived adherent cells
CN101748096B (zh) 2008-12-17 2013-03-13 北京汉氏联合生物技术有限公司 亚全能干细胞、其制备方法及其用途
US20100247495A1 (en) 2009-03-30 2010-09-30 Tom Ichim Treatment of Muscular Dystrophy
WO2010124235A1 (en) 2009-04-23 2010-10-28 Cytori Therapeutics, Inc. Use adipose tissue-derived regenerative cells in the modulation of inflammation in the pancreas and in the kidney
CA2771908C (en) 2009-08-25 2019-05-21 Tissuetech, Inc. Umbilical cord amniotic membrane products
KR101316573B1 (ko) 2009-10-27 2013-10-15 도병록 재생성 세포 추출유닛 및 재생성 세포 추출시스템
EA201290527A1 (ru) 2009-12-18 2013-03-29 Си.Би.Би. ЛАЙФЛАЙН БАЙОТЕК ЛИМИТЕД Способы выделения мононуклеарных клеток, которые включают субпопуляцию мезенхимальных клеток-предшественников, и сосудистых клеток, которые включают субпопуляцию эндотелиальных клеток-предшественников, из пуповинной ткани
KR101443133B1 (ko) 2009-12-23 2014-11-03 사이토베라 인코포레이티드 입자여과를 위한 시스템 및 방법
CA2787050A1 (en) 2010-01-14 2011-07-21 Organogenesis, Inc. Bioengineered tissue constructs and methods for producing and using thereof
US8574614B2 (en) 2010-02-04 2013-11-05 Hwa-Chang Liu Surgical grafts for repairing chondral defects
US20120315259A1 (en) 2010-02-18 2012-12-13 Hyman Friedlander Method and composition for skin care comprising cord blood serum or plasma or components thereof
US9192939B2 (en) * 2010-03-23 2015-11-24 Lipogems International S.P.A. Device and a method for preparing a tissue
US8415149B2 (en) 2010-05-06 2013-04-09 Gwo Xi Stem Cell Applied Technology Co., Ltd. Hepatic progenitor cells and uses thereof
US8809054B2 (en) 2010-05-12 2014-08-19 Xpand Biotechnology B.V. Cell-culture-bag
US20120270314A1 (en) 2011-04-19 2012-10-25 Buddhist Tzu Chi General Hospital Non-tumorigenic expansion of pluripotent stem cells
US20120276215A1 (en) 2011-04-26 2012-11-01 Riordan Neil H Therapeutic Conditioned Media
US20120276518A1 (en) 2011-04-26 2012-11-01 John Archie Gillis Method and Device for Perfusing Tissue by ExVivo Attachment to a Living Organism
US20130034524A1 (en) 2011-08-03 2013-02-07 Siamak Agha-Mohammadi Non-Enzymatic Method for Harvesting Adipose-Derived Stromal Cells and Adipose-Derived Stem Cells from Fat and Lipo-Aspirate
TWI535377B (zh) 2011-09-01 2016-06-01 Storage, culture and application of umbilical cord tissue and its derived cells

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN2340373Y (zh) * 1997-10-31 1999-09-29 山东医科大学附属医院 一种旋切活检针
TW200520845A (en) * 2003-12-31 2005-07-01 Ind Tech Res Inst Tissue pulverizer
CN101543413A (zh) * 2008-03-27 2009-09-30 德普伊米特克公司 组织提取和收集装置

Also Published As

Publication number Publication date
EP2775928A1 (en) 2014-09-17
WO2013070899A1 (en) 2013-05-16
IL232290A0 (en) 2014-06-30
CN103997974A (zh) 2014-08-20
KR102001701B1 (ko) 2019-10-01
US8893995B2 (en) 2014-11-25
US9663760B2 (en) 2017-05-30
EP2775928B1 (en) 2019-02-20
US20150132851A1 (en) 2015-05-14
US8967513B1 (en) 2015-03-03
US20150079672A1 (en) 2015-03-19
DK2775928T3 (da) 2019-05-27
IL232290A (en) 2017-11-30
US20160083691A1 (en) 2016-03-24
ES2725564T3 (es) 2019-09-24
US20150079679A1 (en) 2015-03-19
US20130295673A1 (en) 2013-11-07
KR20140105730A (ko) 2014-09-02
AU2012335746B2 (en) 2017-04-27
PT2775928T (pt) 2019-05-30
JP6159729B2 (ja) 2017-07-05
PL2775928T3 (pl) 2019-09-30
SG11201402149TA (en) 2014-06-27
CA2862437A1 (en) 2013-05-16
JP2014534817A (ja) 2014-12-25
US8967512B1 (en) 2015-03-03
EP2775928A4 (en) 2015-07-22
AU2012335746A1 (en) 2014-05-15
US9145544B2 (en) 2015-09-29
CA2862437C (en) 2018-07-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103997974B (zh) 用于处理细胞的系统和方法
JP2014534817A5 (zh)
CN1842589B (zh) 用于从组织分离并且浓缩再生细胞的系统和方法
US9182328B2 (en) Apparatus and method for processing biological material
EP2195418B1 (en) Process and system for the industrial scale purification of bacteriophages intended for bacteriophage therapy
EP3174973B1 (en) Method and assembly for extraction of regenerative cellular components from adipose tissue
KR20110090995A (ko) 세포를 체액으로부터 분리하기 위한 시스템 및 방법
US20200215533A1 (en) Collapsible centrifugation vial system and method
CN102604892A (zh) 一种人类骨髓、脐带血或外周血干细胞样本密度分离液及干细胞分离方法
CN111542350A (zh) 用于制备脂肪来源干细胞的系统和方法
WO2015161057A1 (en) Systems and methods for processing cells
CN101469321A (zh) 一种快速过滤筛选骨髓基质干细胞方法
CN209564684U (zh) 一种自体脂肪分离处理装置
CN101544946B (zh) 细胞、组织或生物材料清洗装置及方法
CN116368217A (zh) 用于从脂肪抽出物中分离间充质基质细胞的封闭系统式方法和可抛弃式组件套件
WO2022269608A1 (en) System and method for isolating, storing and using cells
CN117384735A (zh) 间充质干细胞外泌体的提取系统及其制备方法
CN108949631A (zh) 一种核孔膜在肠道内容物分离中的应用
CN1072954A (zh) 人工流产组织细胞培养基

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant